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實驗人必須要知道的,18個測序常見問題
  • 更新日期:2023-04-01      瀏覽次數(shù):4545
    • 1.為什么需要新鮮的菌液?

      首先,新鮮的菌液易于培養(yǎng),可以獲得更多的DNA,同時最大限度地保證菌種的純度。

      2.如何提供菌液?

      如果您提供新鮮菌液,用封口膜封口以免泄漏;也可以將培養(yǎng)好的4~5ml菌液沉淀下來,倒去上清以方便郵寄。同時郵寄時最好用盒子以免郵寄過程中壓破。

      3.如何制作穿刺菌?

      用滅菌過1.5ml或2ml離心管加入LB瓊脂(7g/L)斜面凝固,用接種針挑取分散良好的單菌落穿過瓊脂直達(dá)管底,不完quan蓋緊管蓋適當(dāng)溫度培養(yǎng)過夜,然后蓋緊蓋子加封口膜,室溫或4度保存。

      4. PCR產(chǎn)物直接測序有什么要求

      (1) 擴(kuò)增產(chǎn)物必須特異性擴(kuò)增,條帶單一。如果擴(kuò)增產(chǎn)物中存在非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物,一般難以得到好的測序結(jié)果;

      (2)必須進(jìn)行膠回收純化;

      (3)DNA純度在1.6—2.0之間,濃度50ng/ul以上。

      5.為什么PCR產(chǎn)物直接測序必須進(jìn)行Agarose膠純化

      如果不進(jìn)行膠純化而直接用試劑盒回收,經(jīng)常會導(dǎo)致測序出現(xiàn)雙峰甚至亂峰,這主要是非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物或者原來的PCR引物去除不干凈所導(dǎo)致。

      大多所謂的PCR“純化試劑盒"實際上只是回收產(chǎn)物而不能起到純化的作用的。對于非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物肯定無法去除,而且通常他們不能夠完quan去除所有的PCR引物,這會造成殘留的引物在測序反應(yīng)過程中參與反應(yīng)而導(dǎo)致亂峰。

      6.如何進(jìn)行PCR產(chǎn)物純化?

      PCR產(chǎn)物首先必須用Agarose膠電泳,將特異擴(kuò)增的條帶切割下,然后純化。使用凝膠回收試劑盒回收,產(chǎn)物用ddH2O溶解。

      7. PCR產(chǎn)物直接測序的好處?

      (1) PCR產(chǎn)物直接測序可以反映模板的真實情況;

      (2) 省去克隆的實驗費用和時間;

      (3) PCR產(chǎn)物測序正確的片段進(jìn)行下一步克隆實驗使結(jié)果更有保障;

      (4) 混合模板進(jìn)行PCR的產(chǎn)物直接測序可以發(fā)現(xiàn)其中的點突變。

      8.對用于測序的質(zhì)粒DNA的要求有哪些?

      對測序模板DNA的一般要求:

      (1)DNA純度要求高,1.6—2.0之間,不能有混合模板,也不能含有RNA,染色體DNA,蛋白質(zhì)等;

      (2)溶于ddH2O中,溶液不能含雜質(zhì),如鹽類,或EDTA等螯合劑,將干擾測序反應(yīng)正常進(jìn)行。

      9.如何鑒定質(zhì)粒DNA濃度和純度?

      我們使用水平瓊脂糖凝膠電泳,并在膠中加入0.5ug/ml的EB(電泳緩沖液中不必加EB),加一個已知濃度的標(biāo)準(zhǔn)樣品。電泳結(jié)束以后在紫外燈下比較亮度,判斷濃度和純度。此方法可以更直接、準(zhǔn)確地判斷樣品中是否含有染色體DNA、RNA等,也可以鑒別抽提的質(zhì)粒DNA的不同構(gòu)型。

      質(zhì)粒DNA的3種構(gòu)型是指在抽提質(zhì)粒DNA過程中,由于各種原因的影響,使得超螺旋的共價閉合環(huán)狀結(jié)構(gòu)的質(zhì)粒(SC)的一條鏈斷裂,變成開環(huán)狀(OC)分子,如果兩條鏈發(fā)生斷裂,就變成為線狀(L)分子。

      這3種分子有不同的遷移率,通常,超螺旋型(SC)遷移速度最快,其次為線狀(L)分子,最慢為開環(huán)狀(OC)分子。

      使用紫外分光光度計檢測,或者用溴乙錠-標(biāo)準(zhǔn)濃度DNA比較法只能檢測抽提到的產(chǎn)物中的濃度,甚至由于抽提的質(zhì)粒DNA中含有RNA、蛋白質(zhì)、染色體DNA等因素的干擾,濃度檢測的數(shù)值也是沒有多少意義的。

      10.為什么抽提的質(zhì)粒最好溶解在ddH2O中?

      全自動熒光測序由于反應(yīng)體系小,所以對于模板DNA的質(zhì)量要求比手工測序高許多。通常的提取質(zhì)粒的試劑盒會提供一個Elution Buffer給用戶洗脫DNA,我們建議用戶不要使用。因為其中含有的如EDTA等組分會對測序反應(yīng)產(chǎn)生干擾,甚至導(dǎo)致測序反應(yīng)失敗。

      11.對測序引物的要求有哪些?

      對測序引物的一般要求:

      (1)特異性與測序模板結(jié)合,不能有多于4個堿基以上的錯配現(xiàn)象;

      (2)不能含有混合堿基;

      (3)長度17-25堿堿;

      (4)純度高,最好PAGE純化;

      (5)用ddH2O溶解,不要用TE溶解。

      12.為什么測序引物必須特異地與DNA模板結(jié)合?

      測序引物與待測樣品DNA分子只能有一個結(jié)合位點是測序成功的前提。如果測序引物在DNA模板分子上有不只一個的結(jié)合位點,將造成測序反應(yīng)過程中引物鏈在幾個結(jié)合位點處同時擴(kuò)增,從而得到鏈長相同而組成不相同的終止鏈,測序電泳時收集到重疊峰或亂峰,無法讀取序列

      13.為什么測序引物3'端以后有30-50堿基無法讀到?

      全自動熒光測序方法由于使用標(biāo)記了大熒光染料的ddNTP,一些未反應(yīng)完的ddNTP底物會連同測序反應(yīng)產(chǎn)物一并被沉淀,在測序電泳時會干擾測序信號,導(dǎo)致這部分堿基無法讀清。

      一般的我們會在分析結(jié)果時切掉這部分無意義的數(shù)據(jù)。通常這也是載體的序列。所以選取測序引物時要使引物3'端離開要求測序的起始位置50bp以上比較合適。而對于PCR產(chǎn)物測序就不可避免使得測序引物區(qū)域附近無法讀到數(shù)據(jù)。

      14.為什么在測序報告上找不到引物序列?

      有如下幾種情況:

      (1)找不到測序所用的引物序列。這是正常的,因為熒光測序方法采用的是熒光標(biāo)記了的ddNTP,自動測序儀通過檢測ddNTP上的熒光來讀取序列。由于引物本身是不被標(biāo)記的,所以在測序結(jié)果中也是找不到的。

      (2)找不到克隆片段的擴(kuò)增引物。原因可能是您在構(gòu)建質(zhì)粒時所用的酶的酶切位點距離您的測序引物太近,由于熒光染料的干擾在序列開始的部分判讀不清。

      (3)還有一種可能是您的插入片段的插入方向是反的,這時可以找一下引物的互補序列。

      (4)存在單引物擴(kuò)增,有一條引物的特異性不好,有多個結(jié)合位點,導(dǎo)致只有一條引物參與擴(kuò)增。

      15.什么是Primer Walking 測序?

      大于片斷較大的樣品,雙向測序如果不能完quan拼接,我們還可以為用戶按照上一個測序結(jié)果在一定的位置左右設(shè)計引物繼續(xù)測序,并將測序結(jié)果拼接,即Primer Walking 測序。

      16.超過6Kb的DNA片斷如何進(jìn)行測序?

      超過6Kb的DNA片斷用Shot Gun 進(jìn)行測序準(zhǔn)確并且節(jié)省時間, Shot Gun方法如下:

      (1)用物理方法打碎DNA;

      (2)回收1~1.5Kb的片斷;

      (3)用核酸酶切平端,連接入載體;

      (4)按照一定比例進(jìn)行測序,保證每一個區(qū)段有3倍以上的數(shù)據(jù);

      (5)編輯所有測序數(shù)據(jù);

      (6)如果有缺少數(shù)據(jù)的區(qū)域,還需要補充測序。拼接成完整序列。

      17.為什么測序結(jié)果完quan不是所需的序列?

      出現(xiàn)這樣的情況只有兩種可能:

      (1)我們給您的測序結(jié)果對應(yīng)的不是您的樣品;

      (2)您的樣品插入部分與您預(yù)期的不一致。

      這時需要雙方將樣品進(jìn)行驗證(PCR和酶切鑒定)。

      18.樣品送測序前已經(jīng)鑒定過了,有插入片段的,為什么測序結(jié)果是一個空質(zhì)粒?

      測序是對樣品的最好驗證.結(jié)果為空載,可能如下:

      (1)可能在培養(yǎng)過程中發(fā)生插入片段的丟失,由于這種情況的發(fā)生無法事先預(yù)期到;

      (2)提供的克隆是假陽性克隆。

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